[桂花树价格]外源化合物对桂花幼苗抗寒性的影响

　　在这项研究中，将不同浓度的水杨酸（SA），脱落酸（ABA），磷酸二氢钾（KH2PO4）和抗坏血酸（VC）正交组合使用，以得到具有不同浓度的组合并用蒸馏水处理。照喷洒在桂花幼苗上进行低温胁迫处理，胁迫结束后，幼苗恢复生长，并观察到叶片相关生长指数和生理生化指标的变化。经确定。果表明：（1）与对照组相比，处理9种复合外源物质能显着提高幼苗的相对生长速度，干物质积累速度和脯氨酸含量。花，降低相对电导率并总体上提高桂花。

　　物的质量。（2）在4°C的低温胁迫下，相对生长速率，干物质积累速率，根系活性，脯氨酸含量，可溶性蛋白含量和糖含量用9种复合外源物质处理的可溶性幼苗明显高于对照。还减缓了丙二醛的积累和相应膜脂的过氧化，降低了相对电导率并提高了桂花幼苗的耐寒性。低温胁迫下，水杨酸，脱落酸，磷酸二氢钾和抗坏血酸的配合物可以提高桂花幼苗的耐寒性，其中SA 0 14 g·L-1 + ABA 0.015 g·L-1 + KH2PO4 3.0 g·L-1 + VC 3.0 g·L-1效果最佳。究结果为新型复合耐寒剂的应用和推广提供技术支持。杨酸（SA）是内源性信号物质和植物激素。年来，已证明SA在种子发芽，幼苗形成，细胞生长，呼吸，气孔关闭，开花和衰老等方面起着重要的调节作用。（李才胜等，2010）。SA处理可以有效提高黄瓜的耐寒性，减少低温下对细胞膜系统的损害，并提高抗氧化酶的活性（Wang Lei等，2010）。SA在寒冷，桂花（Chang Yunxia等，2013），辣椒（Zhang Suqin等，2008），草莓（Fan Guohua等，2008），番茄（Zhangyang等，2012），萝卜（Jinmin等人，2012）。低温胁迫条件下，脱落酸（ABA）可以增加渗透调节物质的可溶性和可溶性蛋白质含量，从而增加细胞膜的稳定性，增加植物中的保护酶可减少膜的脂质过氧化程度并保护膜。构完整性（刘海青等，2015;汤日生等，2002）。Liu Debing等（2007）用不同浓度的ABA溶液喷洒冷加工的香蕉植物，发现不同含量的ABA可以减轻植物的冷害。林等的结果。（2012年）表明，在一定范围内，ABA浓度越高，对植物的危害程度越低，抗性越强。酸二氢钾（KH2PO4）是农作物生产中最常用的叶面喷施肥料之一。存在低温胁迫的情况下，在香蕉幼苗的叶片上施用不同浓度的KH2PO4可以显着提高香蕉幼苗抵抗低温胁迫的能力（李晓超等。2009）。KH2PO4可以增加花生植物保护酶系统的活性，降低质膜的通透性，提高花生植物的抗寒性（Zhou Li等，2008）。坏血酸（CV）具有重要的生物学功能，例如植物细胞的抗逆性和抗病性（He Wenliang等，2004）。CV在低温胁迫下对香蕉有一定的保护作用，桂花树价格可以有效提高香蕉的抗寒性（周启伟等，1998）。花是中国的重要农作物，低温是影响其生长和产量的主要胁迫因素。高桂花的耐寒性是其抗逆性研究的重要组成部分（ Chen Yinping等，2012； Meng Ying等，2009）。许多关于SA，ABA，KH2PO4和VC的抗寒性的报道，但是该复合物对植物的抗寒作用尚未见报道。此，重要的是研究复合外源物质对抗低温的胁迫，以增加令人愉悦的桂花的产量。究材料为“ Yuyu-22”，将相同大小和均一大小的受试种子种植在直径10厘米，高15厘米的塑料杯中。子中的底物由腐殖质养分和每杯5粒种子的土壤组成。过在培养箱中处理获得桂花幼苗，白天和晚上的温度在15°C（10 h）时为20°C（14 h）。SA，ABA，KH2PO4和VC溶解在蒸馏水中以形成溶液，其中SA剂量为0.07、0.14、0.21 g·L-1， ABA的剂量分别为0.015、0.020、0.025 g·L-1和KH2PO4的剂量水平； 1.0、3.0、5.0 g·L-1，VC的剂量水平为1， 0、2.0和3.0 g·L-1。计了四种不同剂量的物质，并用蒸馏水作为对照（CK）。理组依次由CK，D1，D2，D3，D4，D5，D6，D7，D8和D9表示，并且每种处理重复3次。交试验因子的水平如表1所示，正交试验计划如表2所示。桂花达到两叶一心的时期时，桂花幼苗具有良好的品质。择生长和均匀性，并喷涂不同的复合材料，每天8:00喷涂一次，持续3天。时，整个植物都湿了，叶液滴了。时，他还撒了蒸馏水作为证人。后一次喷雾后，转移到人工气候培养箱中进行10°C / 4°C（/晚）的低温胁迫处理，光周期为14 h / 10 h（/晚），温度在压力的第6天将温度调节到20°C。复生长3天（即第9天的治疗），确定生理和生化指标。有植物都充满水，以满足测试过程中正常植物生长所需的水分。0、3和6天选择低温生长的植物生长指标，选择每种生长均匀的处理方法，随机选择10株桂花幼苗，分为3个将它们洗净并自然干燥，然后在恒重烤箱中干燥。别称量干重并计算相应的生长指标。中，W1和W2分别表示时刻t1和t2的干重。物质积累率=（t2d之后的干物质质量-t1d之后的干物质质量）/（t2-t1）。理生化指标由王学奎（2006）确定，脯氨酸含量（酸茚三酮比色法）和可溶性糖含量（蒽酮比色法，2003年）和蛋白质含量确定。溶性。据考马斯亮蓝染色剂G-250（2002）;根据硫代巴比妥酸比色法测定丙二醛含量（Sergiev等，1997； Nakano等，1981）；相对电导率用电导率法测量（罗光华等，1987）。据的统计分析使用Microsoft Excel 2007和SPSS Statistics 17.0软件进行统计分析，并使用Origin Pro 8.5软件进行映射，并使用单向方差分析进行比较。疗组和对照组之间的差异。1显示在4°C下进行了6天的处理后，不同的复合外源物质可以显着提高桂花在低温下的相对生长速率，J1，J2，J3，J4，J5 ，D6，D7，D8，D9处理分别提高了131.64％，141.68％，134.08％，161.11％，158.29％，155.25％，146.51％，147，与对照组相比，分别为86％和148.93％。些结果表明，这9种复合外源物质的处理可以促进桂花幼苗在低温胁迫下的生长发育，提高其抗低温能力，处理效果更好。D4组中。时，外源复合物质处理可显着提高桂花幼苗在4°C下的干物质积累速率，每次处理的干物质积累率为0 ，96％，0.77％，1.01％，3.24％，3.02％，2.91％，1.17％，1.21％和1.25％。些结果表明，这9种复合外源物质可以有效提高低温胁迫下桂花幼苗中各种有机物质的积累速率，D4处理效果明显。图2可以看出，与低温处理之前的对照D1，D2，D3，D4，D5，D6相比，用各种复合外源物质处理的桂花幼苗的根系活性较高。D7，D8和D9处理分别增加了1.14％，7.61％，10.12％，60.99％，58.22％，52.99％，36.66％，49.47％ ％和40.34％。是，治疗组D1与对照组之间的差异不显着。桂花幼苗转移至4°C的低温处理后，根系活性通常会降低，并随着低温处理持续时间的延长而持续降低。是，每个处理组的根部活性始终大于对照活性。中，在6天的低温下，D1，D2，D3，D4，D5，D6，D7，D8和D9的根系活动显着增加了17.40％，17.45％，分别为26.97％，95.70％和78.30％。62.64％，43.50％，52.20％，34.80％。桂花在20°C转移到生长的第九天时，根部活动总体上增加，并且处理J1，J2，J3，J4，J5，J6，J7，J8和J9显着增加。别为4.06％，12.19％和16.25。％，81.27％，69.08％，81.27％，36.57％，44.69％，32.50％。些结果表明，处理这些复杂的外源物质可以有效增强低温胁迫下桂花幼苗的根系活性。
　　且最好用D4治疗该组。3表明，在处理各种复合外源物质之后，桂花处理的幼苗的MDD含量相对于CK没有显着变化。将桂花幼苗转移至4°C进行低温处理时，MDA含量总体上增加，但桂花幼苗的处理仍显着低于未处理的对照。过5天的低温后，这种差异尤为明显。D3，D4，D5，D6，D7，D8和D9的MDA含量显着低于相同对照组的27.39％，41.69％，36.55％，109.92％，97.07 ％，90.01％，51.03％，58.66％和59.31％。桂花在20°C转移到生长的第九天时，对照组的MDA含量继续增加，而治疗组的MDA含量总体下降，D1，D2，D3处理，D4，D5，D6，D7，D8和D9显着低于治疗。36.45％，41.01％，39.23％，61.97％，61.01％，59.13％，46.44％，47.33％，45.56％。时，处理D1，D2，D3，D4，D5，D6，D7，D8，D9的相对电导率分别降低了39.49％，42.37％，40.42％和63.29％。别在6天的低温治疗期间。62.44％，60.31％，52.33％，55.53％，56.73％，并且在20°C下生长的第9天，每组的相对电导率显着降低了52.17％。对于对照，分别为％，54.34％，52.92％，74.62％。％，72.54％，70.01％，62.98％，62.11％，62.69％。以看出，外源复合物质的处理可以显着降低MDA含量和相对电导率，从而提高植物对温度的抵抗力。4显示，在用各种复杂的外源物质处理后，与低温处理之前的CK组相比，D4处理组的处理过的桂花幼苗显示出7.11％的显着增加。对照组相比，D1，D2，D3，D4，D5，D6，D8和D9组的可溶性蛋白质显着增加了12.55％，4.44％，9.84％，42.28。％，36.87％，9.84％，12.55％和7.14％。CK相比，D1，D2，D3，D4，D5，D6和D7显着提高了可溶性糖含量9.55％，18.12％，9.55％，6.69％，6 ，69％，0.98％和0.98％。桂花幼苗在4°C下进行低温处理时，渗透调节物质显着增加，并随着低温处理的结束而继续增加。6天，渗透调节物质脯氨酸和可溶性种子蛋白桂花，可溶性糖含量明显高于对照组，D1，D2，D3，D4，J5，J6，J7，J8，与对照组相比，J9的脯氨酸含量显着增加了23.68％，34.06％，31.93％，114.96％，111.01％，84.95％，63.01％。％，65.55％，68.35％；可溶性蛋白质含量显着增加93.60％，98.83％，94.06％，238.18％，198.45％，192.01％，148.32％，153.67％，160 ，68％;可溶性糖含量分别显着增加了89.02％，117.64％，98.49％，535.52％，492.27％，470.19％，130.51％，138.49％和141.40％。转移至20°C的生长的第9天时，每组的脯氨酸含量分别显着增加了21.55％，28.73％，21.57％，102.32％，87.96％， 75.40％，37.70％，48.47％，44.88％。
　　溶性蛋白质含量分别增加了116.45％，143.26％，162.18％，388.22％，307.114％，302.93％，248.88％，275.91％和248.88％分别。溶性糖含量分别显着增加了53.55％，80.61％，65.18％，334.77％，316.35％，305.81％，94.86％，88.09％和86.74％。些结果表明，通过增加可溶性蛋白质，脯氨酸和可溶性糖（主要是可溶性糖）的含量，每组处理均可提高桂花幼苗的渗透调节能力。中，D4治疗组是最好的。
　　低温胁迫下，细胞膜系统首先受到影响（李琼等，2005）。的渗透性的大小反映了细胞膜损伤的程度，并且相对电导率与对膜的损伤程度正相关。导率越高，对膜的破坏越大（Lei Hongling等，2010）。的脂质过氧化伴随着MDA含量的增加，这也是确定低温胁迫对生物膜的破坏程度的重要指标之一（刘金川等。2010）。项研究表明，在低温处理下，随着低温应力的放弃，相对电导率和MDA含量继续增加，这表明在低温条件下，相对电导率和MDA含量桂花幼苗中的有毒物质超过了抗氧化酶解离的能力。然受伤了。对照组相比，用抗寒复合剂处理的桂花幼苗的相对电导率和MDA水平在整个胁迫和恢复生长过程中均显着低于对照植物，表明耐寒复合剂处理是有用的。花中抗氧化酶的活性增强，捕获自由基的能力也增强，从而降低了桂花幼苗膜脂的过氧化程度，并降低了危害。物的抗寒性和抗寒性导致细胞膜受损。量。与王小梅等人（2016）的研究一致。小梅等人研究了低温条件下杨桃果实品种的抗寒生理指标的变化。对增长率反映了单位时间内植物的生长（秦海波等，2012）。物质积累的速率反映了特定环境条件下有机物质的积累程度（张仁和等，2012）。系活动的直接影响植物对水分和养分的吸收反过来影响物质的转化和合成，也影响植物在低温下的耐受性（王志斌等。（2010年）。本研究中，与对照组相比，由外源物质组成的9种处理方式可以显着提高相对生长速率，干物质积累速率和桂花根系活性。指出，复合外源材料的预处理可以提高桂花幼苗在低温胁迫下的生长能力，减缓温度胁迫对幼苗的伤害，并保持较高的生长速率和生长速率。花幼苗的有机质积累速率保持正常生活。动。植物细胞受损时，它们必须通过渗透调节来保持某些生理功能，以确保一定的溶胀压力（Yan Hongkui等，2012）。环境处于严重压力下时，大多数培养物会在体内积累脯氨酸，可溶性蛋白和可溶性糖，这在调节细胞的渗透势中起着重要作用（朱金芳等。2013）。低温胁迫的植物中增加脯氨酸，可溶性蛋白和可溶性糖可以有效降低细胞液的渗透潜能，防止细胞水分过多流失，桂花树价格并提高植物抗性感冒（严世江等，2011）。项研究表明，在低温条件下，与对照组相比，复合外源物质显着增加了桂花幼苗叶片中的可溶性蛋白，可溶性糖和脯氨酸含量。表明，通过增加可溶性蛋白质，脯氨酸和可溶性糖的含量，维持细胞内和细胞外物质的平衡，对复杂的外源物质进行预处理可能会增加桂花幼苗的渗透调节能力，通过改善细胞膜的稳定性并提高种子对桂花的低温抗性。以可溶性糖为基础。时，增加可溶性糖含量可能表明碳水化合物可以分解复合异物，从而使原生质体的浓度增加，冰点降低，水分流失和霜冻。胞中的抗氧化剂减少，这在一定程度上提高了植物对寒冷的抗性。（王连荣等，2016）。以看出，渗透调节物质的积累是桂花幼苗对低温胁迫响应的另一主要对策。上所述，将不同浓度的外源物质施用到SA，ABA，KH2PO4和VC复合物中可以显着改变桂花幼苗的生理和生化指标，从而提高幼苗的抗寒性。是，不同浓度的物质会影响桂花幼苗的抗寒性：提高桂花抗寒性的最佳浓度组合为SA 0.14 g·L-1 + ABA 0.015 g·L-1 + KH2PO4 3.0 g·L-1 + VC 3.0 g·L-1。
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