[桂花树价格]尖孢镰刀菌抗性研究进展
时间：2019/11/18 6:31:32 浏览量：
已经报道了桂花病原菌的研究，桂花的抗药性机制，尖孢镰刀菌抗性的鉴定，尖孢镰刀菌的遗传以及桂花的分子标记。审查。花（Cucumis sativus L.），也称为西葫芦，是葫芦科（Cucurbitaceae）的一种攀缘草本植物，一年生，原产于热带森林，在温带和热带地区广泛种植[1]。前，中国桂花是栽培面积大，产量高，经济效益好的蔬菜之一[2]。于其松脆的口感，它已成为人们喜欢吃的主要蔬菜之一[3]。花，又名枯萎病，dead病，藤蔓病。疾病是一种全身性疾病，会侵袭根的根部或颈部，并寄生在血管束中。要病原体是枯萎镰刀菌（Fusarium oxysporum（Schl。F. Cucumerinum Owen。它在土壤，病体和肥料以及未受精的农场种子上越冬，成为a年。地，种子，雨水，灌溉水，农业设备等可以传播最初的感染源。花引起的枯萎病可发生在开放和保护的地区，发生率占重土的10％至30％和80％至90％，对菜农造成严重或毁灭性的经济损失[4]。]。前，市场上有许多农药可以控制尖孢镰刀菌，但效果不佳。作可以有效减轻桂花的出现，这在蔬菜种植者所需的农作物与要轮作的作物之间产生了矛盾。接控制是近年来常用的一种预防和控制方法，但是它在时间和金钱上都很昂贵。病品种的选择是防治桂花枯萎病最有效，最安全，最经济的方法[5-6]。们系统地总结了桂花的病原体，耐药性鉴定方法，耐药机理，遗传规律和分子标记，以选择加拿大对FHB具有抗性的新桂花种质。国外，使用与传统育种相关的分子标记。法为选择抗FHB的桂花新品种提供理论依据。萎病是造成全世界桂花开花的主要疾病之一，其病原体是黄瓜欧文（Ocum）黄瓜的尖孢镰刀菌（Schus。xysporum（Schl。）。原体有两个大分生孢子，镰刀状或纺锤形的大分生孢子，无色透明，圆锥形于上细胞，有时稍钩状，倒圆锥形基部，间隔1至3个；不再有无色透明，椭圆形或香肠形的菌丝气体，没有隔膜。原体的表面是光滑的和黄棕色。前，从尖孢镰刀菌f中分离出的病原体主要是尖孢镰刀菌，monoliforme镰刀菌，solani镰刀菌，马齿镰刀菌。在F. semitectum，F。ateritum，F。cuminatum，F。olani，F。erticillioides，F。roliferatum，但前人认为尖镰孢是主要病原体[7-9]，桂花树价格其他菌株是非致病性或减毒株。锐镰刀菌存在生理分化现象：共有四个生理小种，即生理小种1、2、3和4。一个使用桂花的三个变种Msu441034，Msu5819和P，分别在美国，以色列和日本鉴定出枯萎枯萎病菌株，并将这三个国家的菌株分别称为1、2和3族。
国研究人员发现桂花的致病性菌株具有致病性。国的fragrans是一致的，不同于上述三个生理小种，这就是为什么病原菌桂花枯萎被称为4号生理小种[7]。植物遭受寒冷，高温，干旱，蟑螂，病虫害的侵害时，一些植物会致命。些植物的生理活动受到影响，但它们可以生存。期以来，植物一直遭受这种环境压力，一些特性得以保留和加强，有些则被消除。着植物的进化和适应，植物将适应环境并承受环境压力。物还在进化过程中发展出针对病原体的抗病防御机制，这些防御机制可以有效抵抗病原细菌的感染。花对枯萎病的抗性机理包括形态抗性和生理生化抗性。前的研究表明，抗性品种比易感品种更有助于预防病原体感染。如，Chen等人[7]发现导管中侵袭性伤口的病原体的菌丝体扩张速率比抗性品种的菌丝扩张速率慢，并且没有观察到菌丝。抗性品种的皮质薄壁组织中。木质部血管中观察到侵袭体，壁布，褐色物质和皮质实质细胞，在抗病品种中出现得更快。Nursery等[10]的研究表明，大多数尖孢镰刀菌都是从根部或根茎的受损部位侵入，木质部管产生灰棕色物质，并侵入身体，管壁变厚，穿孔板变厚，形成胎体。种现象在抗病品种中更迅速，更频繁地发生。艳玲等研究表明，病原体感染宿主后，抗病材料和敏感材料的结构有很大的不同：抗病材料有角质层，导管分为环型和网状两种，但抗病材料没有角膜。层，只有一圈导管。原体入侵后，抗病材料的细胞壁增厚更快，并且出现褐色物质，侵入体等，而易感材料仅形成call体[ 7]。原体感染可以改变植物细胞的生理和生化变化。些酶可以抵抗活性氧和氧自由基引起的细胞膜损伤，并增强植物对病原菌的抵抗力，但是抗疾病反应机理的变化却有所不同。如，徐建华等。[11]，李欣等。[12]认为，在抗击桂花病的材料中，多酚氧化酶，过氧化物酶和苯丙氨酸氨裂合酶的活性优于易感品种。而，徐启新等[13]认为桂花的抗性与过氧化物酶的活性呈负相关。内外的一些报道都报道了感染了枯萎病的桂花的生理和生化变化。如，马艳玲和其他研究表明，桂花枯萎病的抵抗力与苯丙氨酸解氨酶的活性呈正相关[7]。
文英等[14]研究表明，用尖孢镰刀菌（Fusarium oxysporum）感染了桔梗后，根际的脲酶，过氧化氢酶，纤维素酶和碱性磷酸酶的活性与黄瓜根腐病的活性显着不同。照组。病品种与易感品种的活性迅速增加，在晚期，碱性磷酸酶和脲酶活性比抗病品种的增长更快，抗病品种的过氧化氢酶活性达到显着水平。娟等。[15]发现，高抗性桂花品种金杂4号的几丁质酶的增加比易感品种金燕4号的几丁质酶的增加要大得多。物对病害的抵抗力与绿原酸和阿魏酸含量之间呈显着正相关，而游离氨基酸含量之间无显着差异。
定分子标记。年阶段抗药性的鉴定通常是通过在现场接种病原体来进行的。种不能量化或统一。别时间必须大于2年。
测试的人口很长，需要很多时间。前报道的分子标记具有更多的引物，但使用较少。花抗性的鉴定通常是通过在室内接种苗来进行的，这时，桂花抗性的鉴定是在家中和在家中进行的。国人主要使用根接种法，根充法，土壤法，根浸法和病原体毒素滤液淬灭法。发等五种方法。外报道的桂花烟的接种方法主要包括三种方法：根部充填法，土壤细菌法和生根法，主要方法是生根法。壤法[17-18]，在中国更多地采用根系接种。法，根接种方法和根接种方法。于根系接种方法相对简单，翁祖新等人[19-20]的胚根接种方法已被中国许多研究者所采用。外，人们使用病原性毒素滤液浸泡种植方法来接种尖孢镰刀菌[21]。年来，中国专家周红梅等[22]和陈凤春[23]对培根接种方法，根部接种方法和根部接种方法进行了测试。前，国内外对桂花的接种方法尚无统一标准。前关于抗尖孢镰刀菌f的遗传性传播有几种观点。
人认为桂花的抗性是由一对显性基因控制的，另一些人认为尖酸镰刀菌对特定抗性的传播是一种遗传性状，并且抗性是完全或部分显性的，并且抗性父母和弱势父母F1杂种一代的抗性介于对亲本疾病的抵抗力指数和对疾病抗性的父母的疾病抵抗指数之间。外，王亚娟[24]认为桂花抗药性是由一些隐性基因控制的。Chen Yu [25]和Li Suju [26]认为桂花的抗性是由细胞核控制的，有人认为桂花的抗性是由细胞质控制的[12]。于寄主，病原体和环境影响桂花对枯萎病的抗性，因此对尖孢镰刀菌抗性遗传的研究存在差异。前，分子标记已广泛用于栽培植物的遗传选择中，包括最广泛的（SSR，RFLP，RAPD和AFLP）[27-29]。年来，SSR分子标记技术具有简单，稳定，多态性高的特点，并且优于其他标记，因此得到了广泛的应用。球葫芦作物研究人员已经开发了数千对SSR标记对，用于遗传作图，遗传多样性分析和标记多态性[30-33]。毅[34]为桂花SSR标记奠定了基础，并构建了桂花的高密度SSR遗传图谱，该图谱由7个连锁组组成，包括995个SSR标记，覆盖573 cM，平均密度为0， 6厘米桂花抗枯萎病的分子标记辅助繁殖已逐步实现。Wang Yajuan [24]使用SSR和AFLP技术研究了与尖孢镰刀菌f相关的分子标记。尖孢镰刀菌抗性有关的共性标记（E25M70-170 bp / 167 bp），所选标记与桂花抗性指数之间的距离为8.12 cM。;通过SSR反应系统筛选标记和抗性。genes基因之间的距离为5.98 cM。海英等。[32]使用“ WI2757”和“ Jinyan 2号”作为测试材料，桂花树价格在第十个连锁基团上定位了尖孢镰刀菌抗性基因。海霞等。[35]使用RAPD和BSA技术选择与尖孢镰刀菌抗性基因f.sp.密切相关的RAPD标记。用WIS2757×Jinyan 2和F2。建明等。[36]还获得了两个相同种群的桂花抗性标记，其结合距离分别为14 cM和7 cM。Zhang S.P.等。[37]开发了SSR标记，用于桂花对枯萎病的抗性和抗病基因的定位。红梅等[38]也以WIS2757×金眼2和F2的分离种群为实验材料，获得了9个与抗性基因Fusarium oxysporum f.sp（Foc-4）密切相关的SSR标记以及该基因。FOC-4。于2号染色体上，结合距离分别为1.0 cM和0.9 cM。
前，对桂花的基因组进行了测序，并分析了目标抗病基因与抗病基因（RGA）同源序列之间的关系，以寻找与黄瓜抗性相关的基因。过比较基因组方法更容易检测到疾病抗性基因。凤瑞等。[39]使用差异基因显示技术（DDRT-PCR）研究了对尖孢镰刀菌Cu14材料的抗性，并研究了相关的尖孢镰刀菌f基因。2，发现该基因的145个核苷酸与拟南芥泛素蛋白同源，可能与免疫反应，应激反应等有关。外，Vakalounakis [40]发现桂花抗性基因与抗黑星病基因密切相关。爱军等。
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国研究人员发现桂花的致病性菌株具有致病性。国的fragrans是一致的，不同于上述三个生理小种，这就是为什么病原菌桂花枯萎被称为4号生理小种[7]。植物遭受寒冷，高温，干旱，蟑螂，病虫害的侵害时，一些植物会致命。些植物的生理活动受到影响，但它们可以生存。期以来，植物一直遭受这种环境压力，一些特性得以保留和加强，有些则被消除。着植物的进化和适应，植物将适应环境并承受环境压力。物还在进化过程中发展出针对病原体的抗病防御机制，这些防御机制可以有效抵抗病原细菌的感染。花对枯萎病的抗性机理包括形态抗性和生理生化抗性。前的研究表明，抗性品种比易感品种更有助于预防病原体感染。如，Chen等人[7]发现导管中侵袭性伤口的病原体的菌丝体扩张速率比抗性品种的菌丝扩张速率慢，并且没有观察到菌丝。抗性品种的皮质薄壁组织中。木质部血管中观察到侵袭体，壁布，褐色物质和皮质实质细胞，在抗病品种中出现得更快。Nursery等[10]的研究表明，大多数尖孢镰刀菌都是从根部或根茎的受损部位侵入，木质部管产生灰棕色物质，并侵入身体，管壁变厚，穿孔板变厚，形成胎体。种现象在抗病品种中更迅速，更频繁地发生。艳玲等研究表明，病原体感染宿主后，抗病材料和敏感材料的结构有很大的不同：抗病材料有角质层，导管分为环型和网状两种，但抗病材料没有角膜。层，只有一圈导管。原体入侵后，抗病材料的细胞壁增厚更快，并且出现褐色物质，侵入体等，而易感材料仅形成call体[ 7]。原体感染可以改变植物细胞的生理和生化变化。些酶可以抵抗活性氧和氧自由基引起的细胞膜损伤，并增强植物对病原菌的抵抗力，但是抗疾病反应机理的变化却有所不同。如，徐建华等。[11]，李欣等。[12]认为，在抗击桂花病的材料中，多酚氧化酶，过氧化物酶和苯丙氨酸氨裂合酶的活性优于易感品种。而，徐启新等[13]认为桂花的抗性与过氧化物酶的活性呈负相关。内外的一些报道都报道了感染了枯萎病的桂花的生理和生化变化。如，马艳玲和其他研究表明，桂花枯萎病的抵抗力与苯丙氨酸解氨酶的活性呈正相关[7]。
文英等[14]研究表明，用尖孢镰刀菌（Fusarium oxysporum）感染了桔梗后，根际的脲酶，过氧化氢酶，纤维素酶和碱性磷酸酶的活性与黄瓜根腐病的活性显着不同。照组。病品种与易感品种的活性迅速增加，在晚期，碱性磷酸酶和脲酶活性比抗病品种的增长更快，抗病品种的过氧化氢酶活性达到显着水平。娟等。[15]发现，高抗性桂花品种金杂4号的几丁质酶的增加比易感品种金燕4号的几丁质酶的增加要大得多。物对病害的抵抗力与绿原酸和阿魏酸含量之间呈显着正相关，而游离氨基酸含量之间无显着差异。
定分子标记。年阶段抗药性的鉴定通常是通过在现场接种病原体来进行的。种不能量化或统一。别时间必须大于2年。
测试的人口很长，需要很多时间。前报道的分子标记具有更多的引物，但使用较少。花抗性的鉴定通常是通过在室内接种苗来进行的，这时，桂花抗性的鉴定是在家中和在家中进行的。国人主要使用根接种法，根充法，土壤法，根浸法和病原体毒素滤液淬灭法。发等五种方法。外报道的桂花烟的接种方法主要包括三种方法：根部充填法，土壤细菌法和生根法，主要方法是生根法。壤法[17-18]，在中国更多地采用根系接种。法，根接种方法和根接种方法。于根系接种方法相对简单，翁祖新等人[19-20]的胚根接种方法已被中国许多研究者所采用。外，人们使用病原性毒素滤液浸泡种植方法来接种尖孢镰刀菌[21]。年来，中国专家周红梅等[22]和陈凤春[23]对培根接种方法，根部接种方法和根部接种方法进行了测试。前，国内外对桂花的接种方法尚无统一标准。前关于抗尖孢镰刀菌f的遗传性传播有几种观点。
人认为桂花的抗性是由一对显性基因控制的，另一些人认为尖酸镰刀菌对特定抗性的传播是一种遗传性状，并且抗性是完全或部分显性的，并且抗性父母和弱势父母F1杂种一代的抗性介于对亲本疾病的抵抗力指数和对疾病抗性的父母的疾病抵抗指数之间。外，王亚娟[24]认为桂花抗药性是由一些隐性基因控制的。Chen Yu [25]和Li Suju [26]认为桂花的抗性是由细胞核控制的，有人认为桂花的抗性是由细胞质控制的[12]。于寄主，病原体和环境影响桂花对枯萎病的抗性，因此对尖孢镰刀菌抗性遗传的研究存在差异。前，分子标记已广泛用于栽培植物的遗传选择中，包括最广泛的（SSR，RFLP，RAPD和AFLP）[27-29]。年来，SSR分子标记技术具有简单，稳定，多态性高的特点，并且优于其他标记，因此得到了广泛的应用。球葫芦作物研究人员已经开发了数千对SSR标记对，用于遗传作图，遗传多样性分析和标记多态性[30-33]。毅[34]为桂花SSR标记奠定了基础，并构建了桂花的高密度SSR遗传图谱，该图谱由7个连锁组组成，包括995个SSR标记，覆盖573 cM，平均密度为0， 6厘米桂花抗枯萎病的分子标记辅助繁殖已逐步实现。Wang Yajuan [24]使用SSR和AFLP技术研究了与尖孢镰刀菌f相关的分子标记。尖孢镰刀菌抗性有关的共性标记（E25M70-170 bp / 167 bp），所选标记与桂花抗性指数之间的距离为8.12 cM。;通过SSR反应系统筛选标记和抗性。genes基因之间的距离为5.98 cM。海英等。[32]使用“ WI2757”和“ Jinyan 2号”作为测试材料，桂花树价格在第十个连锁基团上定位了尖孢镰刀菌抗性基因。海霞等。[35]使用RAPD和BSA技术选择与尖孢镰刀菌抗性基因f.sp.密切相关的RAPD标记。用WIS2757×Jinyan 2和F2。建明等。[36]还获得了两个相同种群的桂花抗性标记，其结合距离分别为14 cM和7 cM。Zhang S.P.等。[37]开发了SSR标记，用于桂花对枯萎病的抗性和抗病基因的定位。红梅等[38]也以WIS2757×金眼2和F2的分离种群为实验材料，获得了9个与抗性基因Fusarium oxysporum f.sp（Foc-4）密切相关的SSR标记以及该基因。FOC-4。于2号染色体上，结合距离分别为1.0 cM和0.9 cM。
前，对桂花的基因组进行了测序，并分析了目标抗病基因与抗病基因（RGA）同源序列之间的关系，以寻找与黄瓜抗性相关的基因。过比较基因组方法更容易检测到疾病抗性基因。凤瑞等。[39]使用差异基因显示技术（DDRT-PCR）研究了对尖孢镰刀菌Cu14材料的抗性，并研究了相关的尖孢镰刀菌f基因。2，发现该基因的145个核苷酸与拟南芥泛素蛋白同源，可能与免疫反应，应激反应等有关。外，Vakalounakis [40]发现桂花抗性基因与抗黑星病基因密切相关。爱军等。
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