[桂花树价格]NaCl胁迫对桂花幼苗萌发及保护酶生长的影响
时间：2019/11/26 6:32:33 浏览量：
利用深层营养液培养法研究了NaCl胁迫对桂花幼苗萌发，子叶生长以及保护酶活性的影响。果表明，不同浓度的NaCl溶液可以不同程度地抑制桂花的种子萌发和幼苗生长，并改变桂花叶片的酶促保护活性。盐土壤对桂花的发芽和种子生长的影响较小，并且不影响种植。
桂花不同，富含盐分的区域不适合桂花种子的发芽和生长。壤盐渍化是影响植物产量的主要因素之一[1]。着蔬菜栽培的飞速发展，二次土壤盐渍化已成为我国蔬菜生产可持续发展的主要挑战之一。胁迫对植物的伤害是多方面的：它可以破坏植物的养分平衡，抑制养分吸收和功能[2]，改变细胞中离子的浓度和类型并破坏膜的完整性，降低某些酶的功能。
盐胁迫的情况下，植物的光合作用会受到显着影响，活性氧（如02-·，·OH）的产生和去除之间的平衡会受到破坏，从而增加了其含量。活性氧中会破坏细胞并进一步影响植物的生长。该实验中，使用深饲料水培溶液（DFT）和金岩4桂花研究了不同NaCl处理浓度对发芽率，幼苗生长和植物生长的影响。花叶片的保护酶。NaCl胁迫对桂花的生理机制为保护性栽培中桂花的盐分破坏提供了理论依据。试验于2015年4月在枣庄市台儿庄区农业示范基地进行。桂花金进4号品种进行了测试。验由五种处理组成：用分析纯NaCl制备浓度分别为0.30、60.90、120 mmol / L的NaCl溶液。用桂花处理过的种子浸泡6小时并溶胀，然后将其置于盖有两层滤纸的培养皿中。盒100粒谷物均添加5毫升不同浓度的NaCl溶液。蒸馏水处理过的种子用作对照。议不要将溶液积聚在培养皿的底部，并且每次处理都要重复3次。培养皿放在RXZ人工智能培养箱中以避光，并将温度调节至25。第三天计算不同处理过的种子的发芽势，并评估发芽率和长度在第五天计数根。营养液Hoagland和Arnon [3]处理桂花的幼苗，并固定在5个NaCl浓度梯度下（T1：0）。T2：30 mmol / L; T 3：60mmol·L-1； T4：90mmol·L。-1; T5：120mmol.L-1。
实验过程中，采用深层流体技术（DFT）的水培法每3天调整一次pH值，将营养液的pH值调整为6.3±0 ，1，桂花树价格并且每4天更换一次营养液。验盆由大型的，刚性的65厘米（L）x 50厘米（L）x 35厘米（H）的塑料盆组成，其中种植了十二种桂花植物，每株都用三个盆进行处理。4月6日，选择了桂花的桂花苗和预先培养的大小均一的苗，洗净根基，移植到塑料盆和由3层塑料泡沫板组成的圆盖中。厘米厚的塑料锅盖上。盖子上挖12个3厘米直径的小孔，用海绵覆盖幼苗的胚轴，然后将它们种植在小孔中。4月15日，测量了桂花的高度，空气质量，地下新鲜质量和酶活性。根颈到生长点测量植物的高度。MP200B电子秤用于称量叶子，土壤的新鲜质量和土壤的新鲜质量。基蓝四唑光还原法（BNT）测定超氧化物歧化酶（SOD）活性，愈创木粉法测定过氧化物酶活性（POD），卡克马克法[4]用于测定过氧化氢酶活性（CAT）。1表明，在不同NaCl处理浓度下，金盐4号桂花幼苗的发芽势，发芽率和根长均受到不同程度的抑制，且两者之间存在差异。疗意义重大。浓度低于60mmol·L-1时，NaCl对种子发芽势，桂花树价格发芽率和发根长度的影响较小；当NaCl浓度大于90mmol·L-1时，种子发芽势，发芽率和发根长度受到的影响较小。·L-1，盐胁迫抑制种子发芽。果非常显着，种子的发芽势和发芽率已开始显着下降，种子的发根长度已显着减少，这与搜索结果相似来自杨秀玲等。[5]。以看出，随着NaCl浓度的增加，发芽势，发芽率和发根长度逐渐降低，并且与NaCl浓度呈极显着的负相关。2的结果表明，在不同浓度下，新鲜根质量，新鲜根与桂花幼苗的比率均低于对照，并且随着浓度的增加而逐渐降低。化钠。NaCl浓度为30 mmol / L时，根系表面的新鲜质量和根/芽的比例均低于对照，分别降低了11.56％，26.29％和。18.37％。
NaCl浓度为120mmol·L-1时，土壤的鲜质量，根系的新鲜质量和植物覆盖受到高盐胁迫，生物量的积累显着降低，且盐分下降。胁迫进一步抑制了生长，分别降低了67.12％和8.87。％和38.78％，与对照组相比差异非常显着。低NaCl处理下，桂花幼苗的表面新鲜度，根部新鲜度和根/茎比（R / S）与对照相比略有不同，但要注意里面的盐胁迫。些酶在体内的活性会刺激营养生长，就像水稻和玉米秸秆的产量可能没有受到显着影响一样，但是它们的谷物产量会大大降低[6]。表3所示，就SOD活性而言，NaCl浓度分别为30、60、90、120mmol·L-1的四种处理，桂花叶片的SOD活性均显着较高。为对照目击者，分别增加了33.06％和26.63％。21.69％和15.69％。时，处理之间的活性随NaCl浓度的增加而降低，这可能是由于低浓度的NaCl可能会刺激保护性酶的活性以保护植物免受损伤，高浓度破坏植物细胞，从而增强了保护酶的活性。低。表明，尽管盐的作用增加了保护酶的活性，但其调节能力也受到限制[7-10]。POD活性而言，当NaCl浓度为30mmol·L-1时，桂花叶片的POD活性最高，显着高于其他处理和对照。对照组相比增加了43.11％。
CAT活性大于空白，并在NaCl浓度为60 mmol.L-1时达到峰值，但在低浓度（≤60mmol.L-1）和高浓度（ ≥90 mmol.L-1）NaCl溶液。别不大。兴门等[11]认为，盐胁迫下枸杞叶片中的SOD等保护性酶活性增加，Davenport等[12]表明用向日葵处理在175 mmolLL-1NaCl胁迫下，叶片中SOD和CAT的活性增加。测试的结果相似。
上所述，低浓度60mmol·L-1NaCl对桂花种子的发芽，根长，根质量和鲜根几乎没有影响。fragrans，但较高（≥90mmol·L-1）。具有强大的抑制作用，这可能是由于减少了碳吸收，增加了用于渗透调节的能量消耗以及为维持生长而增加的能量消耗的结果。NaCl胁迫对桂花根的抑制作用大于地上部分。NaCl处理的桂花中SOD，POD和CAT保护酶的活性明显高于对照，而当NaCl浓度低于60mmol·L-1时，其活性较高。相关性表明，尽管盐胁迫增强了保护性酶活性，但其调节能力也受到限制。
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桂花不同，富含盐分的区域不适合桂花种子的发芽和生长。壤盐渍化是影响植物产量的主要因素之一[1]。着蔬菜栽培的飞速发展，二次土壤盐渍化已成为我国蔬菜生产可持续发展的主要挑战之一。胁迫对植物的伤害是多方面的：它可以破坏植物的养分平衡，抑制养分吸收和功能[2]，改变细胞中离子的浓度和类型并破坏膜的完整性，降低某些酶的功能。
盐胁迫的情况下，植物的光合作用会受到显着影响，活性氧（如02-·，·OH）的产生和去除之间的平衡会受到破坏，从而增加了其含量。活性氧中会破坏细胞并进一步影响植物的生长。该实验中，使用深饲料水培溶液（DFT）和金岩4桂花研究了不同NaCl处理浓度对发芽率，幼苗生长和植物生长的影响。花叶片的保护酶。NaCl胁迫对桂花的生理机制为保护性栽培中桂花的盐分破坏提供了理论依据。试验于2015年4月在枣庄市台儿庄区农业示范基地进行。桂花金进4号品种进行了测试。验由五种处理组成：用分析纯NaCl制备浓度分别为0.30、60.90、120 mmol / L的NaCl溶液。用桂花处理过的种子浸泡6小时并溶胀，然后将其置于盖有两层滤纸的培养皿中。盒100粒谷物均添加5毫升不同浓度的NaCl溶液。蒸馏水处理过的种子用作对照。议不要将溶液积聚在培养皿的底部，并且每次处理都要重复3次。培养皿放在RXZ人工智能培养箱中以避光，并将温度调节至25。第三天计算不同处理过的种子的发芽势，并评估发芽率和长度在第五天计数根。营养液Hoagland和Arnon [3]处理桂花的幼苗，并固定在5个NaCl浓度梯度下（T1：0）。T2：30 mmol / L; T 3：60mmol·L-1； T4：90mmol·L。-1; T5：120mmol.L-1。
实验过程中，采用深层流体技术（DFT）的水培法每3天调整一次pH值，将营养液的pH值调整为6.3±0 ，1，桂花树价格并且每4天更换一次营养液。验盆由大型的，刚性的65厘米（L）x 50厘米（L）x 35厘米（H）的塑料盆组成，其中种植了十二种桂花植物，每株都用三个盆进行处理。4月6日，选择了桂花的桂花苗和预先培养的大小均一的苗，洗净根基，移植到塑料盆和由3层塑料泡沫板组成的圆盖中。厘米厚的塑料锅盖上。盖子上挖12个3厘米直径的小孔，用海绵覆盖幼苗的胚轴，然后将它们种植在小孔中。4月15日，测量了桂花的高度，空气质量，地下新鲜质量和酶活性。根颈到生长点测量植物的高度。MP200B电子秤用于称量叶子，土壤的新鲜质量和土壤的新鲜质量。基蓝四唑光还原法（BNT）测定超氧化物歧化酶（SOD）活性，愈创木粉法测定过氧化物酶活性（POD），卡克马克法[4]用于测定过氧化氢酶活性（CAT）。1表明，在不同NaCl处理浓度下，金盐4号桂花幼苗的发芽势，发芽率和根长均受到不同程度的抑制，且两者之间存在差异。疗意义重大。浓度低于60mmol·L-1时，NaCl对种子发芽势，桂花树价格发芽率和发根长度的影响较小；当NaCl浓度大于90mmol·L-1时，种子发芽势，发芽率和发根长度受到的影响较小。·L-1，盐胁迫抑制种子发芽。果非常显着，种子的发芽势和发芽率已开始显着下降，种子的发根长度已显着减少，这与搜索结果相似来自杨秀玲等。[5]。以看出，随着NaCl浓度的增加，发芽势，发芽率和发根长度逐渐降低，并且与NaCl浓度呈极显着的负相关。2的结果表明，在不同浓度下，新鲜根质量，新鲜根与桂花幼苗的比率均低于对照，并且随着浓度的增加而逐渐降低。化钠。NaCl浓度为30 mmol / L时，根系表面的新鲜质量和根/芽的比例均低于对照，分别降低了11.56％，26.29％和。18.37％。
NaCl浓度为120mmol·L-1时，土壤的鲜质量，根系的新鲜质量和植物覆盖受到高盐胁迫，生物量的积累显着降低，且盐分下降。胁迫进一步抑制了生长，分别降低了67.12％和8.87。％和38.78％，与对照组相比差异非常显着。低NaCl处理下，桂花幼苗的表面新鲜度，根部新鲜度和根/茎比（R / S）与对照相比略有不同，但要注意里面的盐胁迫。些酶在体内的活性会刺激营养生长，就像水稻和玉米秸秆的产量可能没有受到显着影响一样，但是它们的谷物产量会大大降低[6]。表3所示，就SOD活性而言，NaCl浓度分别为30、60、90、120mmol·L-1的四种处理，桂花叶片的SOD活性均显着较高。为对照目击者，分别增加了33.06％和26.63％。21.69％和15.69％。时，处理之间的活性随NaCl浓度的增加而降低，这可能是由于低浓度的NaCl可能会刺激保护性酶的活性以保护植物免受损伤，高浓度破坏植物细胞，从而增强了保护酶的活性。低。表明，尽管盐的作用增加了保护酶的活性，但其调节能力也受到限制[7-10]。POD活性而言，当NaCl浓度为30mmol·L-1时，桂花叶片的POD活性最高，显着高于其他处理和对照。对照组相比增加了43.11％。
CAT活性大于空白，并在NaCl浓度为60 mmol.L-1时达到峰值，但在低浓度（≤60mmol.L-1）和高浓度（ ≥90 mmol.L-1）NaCl溶液。别不大。兴门等[11]认为，盐胁迫下枸杞叶片中的SOD等保护性酶活性增加，Davenport等[12]表明用向日葵处理在175 mmolLL-1NaCl胁迫下，叶片中SOD和CAT的活性增加。测试的结果相似。
上所述，低浓度60mmol·L-1NaCl对桂花种子的发芽，根长，根质量和鲜根几乎没有影响。fragrans，但较高（≥90mmol·L-1）。具有强大的抑制作用，这可能是由于减少了碳吸收，增加了用于渗透调节的能量消耗以及为维持生长而增加的能量消耗的结果。NaCl胁迫对桂花根的抑制作用大于地上部分。NaCl处理的桂花中SOD，POD和CAT保护酶的活性明显高于对照，而当NaCl浓度低于60mmol·L-1时，其活性较高。相关性表明，尽管盐胁迫增强了保护性酶活性，但其调节能力也受到限制。
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