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栽培

复合生物制剂对桂花植物抗寒性的影响

时间:2019/12/16 6:29:27 浏览量:
  
  用稀释600倍的复合有机制剂对黄瓜黄瓜幼苗进行叶面喷洒,可使桂花幼苗保持叶片中的水分并保持较高水平的超氧化物歧化酶(10°C±1° C)在低温下的应力。(SOD)和葡萄糖,可溶性蛋白和脯氨酸(Pro)的含量减少了丙二醛(MDA)的积累并提高了桂花植物的抗寒性。花(Cucumis stavus L.)是来自热带地区的高温蔬菜。适合生长的温度范围狭窄,并且不能耐受低温(低于10°C,容易受冷)。决定了桂花必须在高于10°C的温度下成功生长。着近年来桂花的迅速发展,低温下的压力越来越影响桂花的正常生长。花。报道,适量外源甜菜碱的使用可以提高桂花幼苗的抗寒性,减弱其对植物保护酶的低温胁迫抑制作用,抑制丙二醛的产生。(MDA),减少膜的破坏和渗透[1]】;一些研究还指出,水杨酸处理过的桂花,油菜籽,草莓等农作物也可以提高植物的抗寒性[2-4];氯化胆碱与各种自由基清除剂结合使用可对抗桂花性病。爱也有改善作用[5]。
  管先前已经进行了许多关于外源物质改善桂花植物抗寒性的研究,但通常只使用一种物质,而有机制剂是由核黄素,甲壳质等制成的。用于改善桂花植物的抗寒性。究很少。本实验中,以桂花植物为试验材料,系统研究了复合生物制剂对超氧化物歧化酶(SOD)活性以及丙二醛和脯氨酸(Pro)含量的影响。温胁迫下膜脂过氧化这些抗寒生理指标的变化阐明了复合生物制剂对桂花植物抗寒性的作用机理。

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  果报告如下。花是白色的丝绸,复合有机产品(以核黄素和几丁质为基质)被视为产品。择固体,大小均一的桂花种子,用水冲洗10分钟,然后在60至70°C的温水中浸泡40分钟,然后将其放入40°C的培养箱中促进发芽。择发芽的种子,将其种植在装满土壤的塑料杯中,每杯播种一次,然后在玻璃温室中生长,昼夜温度为24°C / 20°C,PDF为150μmol/(m·s),相对湿度为70%。它在4片叶子和1个心脏中生长时,用复合生物制剂处理。于有4片叶子和1个心的幼苗,将有机制剂溶液喷洒600倍喷雾水作为对照,喷雾24小时后,将幼苗转移至10°C±1的人工气候箱中室温下放置5天,PTO为60μmol/(m·s),RH为65%,光周期为12 h / 12 h。后,将生长恢复至室温3天,在此过程中,测量了复合生物制剂处理和对照的相关耐寒性指数。过干燥和称重法测量叶组织的水分含量;用电导率仪DDS-11A测量质膜的相对渗透率[6]。溶性糖含量用蒽酮的乙酸乙酯法测定[6]。定脯氨酸含量。用茚三酮法[6]。考马斯亮蓝法测定可溶性蛋白含量。氧化物歧化酶的活性按照朱光连的方法测定[7]。MDA含量用硫代巴比妥酸比色法测定[6]。低温胁迫和恢复生长过程中,生物化合物对桂花幼苗叶片水分含量的影响结果如图1所示。
  着扩展,两者之间的差异变为逐渐重要。低温胁迫下,对照叶片和处理过的幼苗的水分含量下降。温胁迫5天后,对照植物叶片的水分含量在低温胁迫之前为83.1%,复合生物制剂处理在胁迫之前为93.1%,两者之间的差异已达到显着水平。复3天后,复合生物制剂处理过的幼苗叶片的水分逐渐恢复到低温胁迫前的水平。照幼苗的恢复程度较小。合生物制剂对低温胁迫下质膜相对通透性和桂花幼苗恢复的影响结果如图2所示。图2中可以看出,随着低温下应力的扩展,两片叶子的质膜的相对渗透率增加了。而,对照的增加更大,用复合生物剂处理的变化更小并且保持在30%左右。复3天后,对照质膜的相对渗透率继续增加,而用复合生物剂处理的变化很小,并且两者之间的差异是显着的。低温胁迫下,复合生物制剂和对照苗中MDA含量的变化趋势与质膜相对渗透率的变化趋势一致,并且随着延长了低温下的应力时间(图3)。过相关性分析,我们可以看到两者之间的相关系数已达到0.911 67,表明两者之间存在正相关,并且差异非常显着。此,维持质膜的相对渗透性可以减少幼苗的叶细胞中MDA的产生。4示出了在低温胁迫和恢复生长期间化合物生物制剂对桂花幼苗的可溶性糖含量的影响的结果,如图4所示。合生物制剂和对照处理的幼苗的可溶性糖含量增加,但复合糖增加。生物制剂处理中,特别是在胁迫的第五天,可溶性糖含量较高。合生物处理比对照处理高1.38倍,两者的可溶性糖含量分别比低温下的早期胁迫水平高1.18倍和1倍。.82次。
  复生长后,无论是否经过生物制剂处理,可溶性糖含量均下降,接近应激前的水平。表明在低温胁迫下,幼苗可以增加其体内可溶性糖的含量,从而增加叶细胞中溶质的浓度,从而导致水势降低,从而提高细胞的渗透调节能力。有助于提高幼苗对低温胁迫的适应性。复生长后,植物的可溶性糖含量与胁迫相比持续下降,并逐渐恢复到正常水平。结果与先前的研究结果一致,在该研究中,可溶性糖可以增加原生质体的浓度,从而起到抗脱水作用并降低细胞内凝胶的风险[8-12]。氨酸是防冻剂的有效成分[9-15]。植物越冬期间,脯氨酸的积累不仅可以作为氮的来源来储存能量,而且还可以与糖结合以保护植物免受霜冻损害[9-13]。合生物制剂对低温胁迫和恢复生长过程中桂花幼苗脯氨酸含量的影响结果如图5所示。含量的变化是一致的,在压力开始时它们都持续增加,然后在恢复生长后逐渐下降。管处理和对照组之间的脯氨酸含量没有显着差异,但是在低温下的第五天,复合生物制剂的处理与对照组之间的差异达到了最大的。复生长后,两者的脯氨酸含量水平接近,但与常温相比,两者均高于常温。溶性蛋白含量与植物的抗寒性之间的关系非常紧密,并且在多种抗寒植物中都发现了它们的平行生长关系[8]。究表明,由于诱导了低温,因此可以在植物体内合成新蛋白质,从而增加了细胞溶胶的浓度,从而降低了溶液在植物细胞中的凝固点并改善了因此其耐寒性[10]。
  合生物制剂对低温胁迫下桂花幼苗可溶性蛋白质的影响及生长过程中恢复的结果如图6所示。者的含量随着胁迫的增加而逐渐增加。温时间延长,差异显着;恢复生长后,它们减少了,但对照的可溶性蛋白含量恢复的程度较小。7说明了在低温胁迫下桂花幼苗的SOD活性和在生长过程中恢复的复合生物制剂的作用结果。与李云英的结果有些不同。
  [1]用国标处理桂花。们的研究表明,用GB处理后,在低温胁迫下,处理和对照幼苗的SOD活性均保持下降趋势。复增长后,两者呈上升趋势。实验中,用复合生物制剂处理的幼苗的SOD活性在低温胁迫的第一天迅速增加,是对照植物的SOD活性的1.11倍。着低温下应力的增加,SOD活性呈下降趋势。低温胁迫的第一天,对照幼苗变化不大,但是在低温胁迫的第三天突然增加,然后下降。随后的胁迫生长过程中,用复合生物制剂处理的幼苗的SOD活性高于对照。复生长3天后,用复合生物制剂和对照处理的植物的SOD活性增加,而用复合生物制剂处理的植物的SOD活性显着增加。力前,两者的SOD活性分别为1.26和1.14。间。表明该复合生物剂的恢复和增加的能力比对照的稍高。温,七个时段(低温下0 d,1 d,3)的七个应力耐受性指标(叶水分,质膜的相对渗透性,MDA,SOD,可溶性蛋白,可溶性糖,脯氨酸) j,5 d和恢复生长3 d),x1是叶片的水分含量,x2是质膜的相对渗透率,x3是MDA含量,x4是SOD活性,x5可溶性蛋白质含量,x6为可溶性糖含量,x7为防腐剂。
  过SAS软件(Proctor过程)分析了氨基酸的含量,以求出其整体的简单相关性,结果显示如下。据以上分析,并结合7个不同的因子负荷指标和3个不同的公共因子进行比较,我们可以看到,第一个公共因子主要控制x5(可溶性蛋白质含量),桂花树价格x6(可溶性糖含量),x7(脯氨酸),酸含量),第二个公因子基本上主导着x1(叶水分含量),x3(丙二醛含量),x4(超氧化物歧化酶活性),而第三个公因子基本上主导着x2(质膜的相对渗透率)。结果表明,第一个公因子反映了适应性因子并指向了弹性;第二个共同因素反映了压力因素并指向强度。三个共同因素反映了敏感性因素并指出了敏感性。据测试结果,无论是否处理了复合生物制剂,低温胁迫都会对桂花幼苗的生长造成一定程度的损害,从而导致幼苗叶片受损,减少水含量和细胞含量泄漏;但是用复合生物制剂处理可以减少低温下应力对质膜的损害。
  外,在研究中发现,在低温应力下,MDA含量与质膜的相对渗透率之间存在显着的正相关。低温胁迫下,该复合生物制剂增加了桂花幼苗叶片中可溶性糖,可溶性蛋白和脯氨酸的含量,从而增加了叶片中溶质的浓度,从而降低了该点。结同时,通过提高SOD的活性,消除在逆境条件下产生的O2和H2O2的能力抑制了MAD的大量积累。降低了质膜的相对渗透性,并防止了细胞受到严重破坏。上所述,基于核黄素,几丁质等底物的复合生物制剂主要通过保持幼苗的高敏感性和提高其在低温胁迫后的适应性来提高幼苗的抗寒性,因此幼苗在逆境下能很好地适应,减少因压力而造成的伤害。于上述方法,降低细胞内水势并使质膜的相对渗透率保持在较低水平可以提高幼苗在逆境中的成活率,从而使其恢复到正常水平。复增长后尽快正常增长。
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