低钾胁迫对桂花生长和抗氧化酶活性的影响

　　桂花被用作测试材料，以研究其在低钾胁迫下的生理反应。果表明，与钾水平正常的植物相比，桂花生长缓慢，在低钾胁迫下表现出绿化症状，同时SOD和APX的活性增加，CAT和POD的活性增加。低，MDA含量也随钾疗法的浓度而变化。少和增加。是植物生长和发育所必需的矿物质，在植物的生长和代谢中起着核心作用。

　　统计，世界上13×108hm2的耕地中有22.5％受到养分的严重压力，其中约40％为钾缺乏。前，除了钾肥丰富的黑土和黑石灰石土以外，在其他地区施用钾肥的效果也很明显。国大部分地区的土壤普遍缺钾，严重缺钾和普遍缺钾约占该国耕地总面积的23％。缺乏已成为许多地区作物生长的压力源。参与植物中各种酶活性的调节，并且广泛认为钾缺乏对叶片光合作用的影响是植物异常生长的主要原因。
　　钾通常会生出矮小的植物，在叶尖和叶边缘有烧伤和斑点，随着生长时间的延长，症状加剧，同化效率受到抑制，导致植物过早衰老。此，研究低钾条件下农作物的代谢非常重要。桂花（Cucumis sativus L.）作为金春2号进行测试。种子灭菌，然后播种在潮湿的基质中。选择两片真叶时，选择规则生长的植物，并移植到装有6 L营养液的塑料盆中进行预培养，每盆6株。个营养液的配方如下：5.0 mmol / L Ca（NO3）2，5.0 mmol / L KNO3，1.0 mmol / L KH2PO4，2.0 mmol / L MgSO4，10μmol/ L MnSO4、29.6μmol/ L H3BO3、0.95μmol/ L CuSO4、1.0μmol/ L ZnSO4、0.05μmol/ L H2MoO4。全营养溶液中预培养3天后进行处理。营养溶液的培养物用作对照（CK）。钾处理中钾的浓度分别为0.5和0.1 mmol / L。养液的其他成分与总营养液相同。3种治疗方法，每种治疗方法重复3次。养液每4天更换一次，治疗20天后测量生理指标。物的高度和生物量的确定在处理后4、8、12和16天测量植物的高度。理完成后，打开工厂的地面和地下部分，用去离子水冲洗，干燥并称重。测量过程中，用50 mmol / L的PBS缓冲液（含2％PVP，桂花树价格0.2 mmol / L的EDTA和5 mmol / L的AsA）取0.5 g样品，测定抗氧化酶活性。APX），在冰浴中研磨和提取。匀浆在低温下以12，000×g离心20分钟。清液用于测定酶活性和MDA含量。SOD活性的测定：根据Stewart和Bewley的方法（1980）。

　　0.05 ml上清液并加入3 ml反应溶液（含13 mmol / L的蛋氨酸，63μmol/ L的NBT，1.3μmol/ L的核黄素，0.1 mmol / L的EDTA;使用50 mmol / L pH 7.8磷酸盐缓冲液）。25℃和4000lx下25分钟后，在黑暗中停止反应，并立即在560nm处测量吸光度，使用缓冲溶液代替酶溶液作为空白。过将NBT光化学反应抑制50％作为酶活性的单位来表达酶活性。APX活性的测定：Nakano和Asada（1981）的改进方法。
　　100μl上清液，加入25 mmol / L磷酸盐缓冲液（pH 7.0，含0.1 mmol / L EDTA）1700μl，20 mmol / L H2O2 100μl，5 mmol / L AsA 100μl，25° C下反应。据动力学程序，使用Shimadzu紫外可见分光光度计（SHIMADZUUV-2450PC）测定OD290的动力学变化。20秒的动力学变化以计算酶反应速率。

　　收系数为2.8。POD活性的测定：根据Nickel和Cuningham（1969）的方法。100μl上清液，在25°C下添加25 mmol / L磷酸盐缓冲液（pH 7.0，含0.1 mmol / L EDTA）1700μl，20 mmol / L H2O2 100μl，1％愈创木酚100μl C回应。据Kinetics程序，使用紫外可见的Shimadzu分光光度计（SHIMADZUUV-2401PC）确定OD470的动力学变化。20秒的动力学变化以计算酶反应速率。收系数为26.6。CAT活性的测定：Patra等人的方法。（1978）被使用。100μl上清液，加入1，700μl25 mmol / L磷酸盐缓冲液（pH 7.0，含0.1 mmol / L EDTA），200μl100 mmol / L H2O2，在25°C下反应。himadzu分光光度计根据动力学程序，使用紫外可见光（SHIMADZUUV-2401PC）确定OD240的动力学变化，并以10 s的动力学变化计算酶促反应的速率。收系数为39.4。MDA含量的测定：使用硫代巴比妥酸法。植物承受压力时，不可避免地会影响其生长，而钾含量低会严重影响桂花植物的生长。
　　图1中可以看出，在低钾胁迫下，桂花的植株矮小，生长缓慢且根系发育不充分。对于地上的土壤水平，根系的生长受到更大的抑制。株植物的鲜重分别降至对照的44.3％和36.0％。与Cakmak等人的结果一致。

　　
　　（1994）[1]在芸豆中，表明同化为释放的桂花的出口途径已被阻止。低钾胁迫下，叶片的O-2•含量显着增加，从而影响了SOD活性。
　　图2中可以看出，与根系相比，低钾胁迫对叶片中SOD的影响尤为明显，其SOD活性分别为26.5％和87.3％分别高于证人。果表明，低钾胁迫增加了桂花幼苗中O-2•的产生，从而导致SOD活性增加。图3中可以看出，CAT活性随钾浓度的降低而降低。片中梯度的变化更为明显，分别降至对照的58.4％和12.2％。可能是由于H2O2在叶绿体中过度积聚，导致CAT活性降低。图4中可以看出，低钾胁迫对根系中POD活性的影响非常明显。系中的POD活性仅为对照的43％和10％，但对叶片中POD活性的影响并不显着。图5中可以看出，低钾胁迫增加了APX活性。对照相比，两种处理的叶片活性分别提高了0.7％和16％，在根系中的活性与对照相比分别提高了18.1％和20.6％。着钾浓度的降低，依赖于抗坏血酸的H 2 O 2依赖性途径的酶活性在植物中增加。图6中可以看出，低钾胁迫对MDA含量的影响非常明显。的含量比对照高38.8％和155％，叶片中MDA的含量分别比对照高3.17倍和4.25倍。表明在低钾胁迫下，O-2•产量的迅速增加导致植物中活性氧的积累，进而加剧了膜的脂质过氧化作用。
　　胞。量研究表明，在正常条件下，为了保护光合作用器官免受光的损害，过量的激发能以能量耗散的形式损失掉，其产生和产生活性氧处于动态平衡状态。电后，叶片的开放式PSⅡ天线色素系统的光能转换效率降低，有效光合作用量子产率降低，能量的过度积累导致大量光能的产生。物中的活性氧，从而诱导抗氧化酶活性的提高。

　　是，当压力持续存在时，就不再可能通过增加抗氧化酶的活性来消除过量的活性氧，而活性氧会永久性地侵蚀大分子，从而降低抗氧化酶的活性和不可逆转的损害，继而导致细胞膜中脂质的过氧化和丙二醛含量增加。来。验结果表明，随着营养液中钾含量的降低，桂花桂花幼苗生长缓慢，植株矮小，根系受到明显抑制。氧化酶SOD和APX的活性增加，CAT和POD的活性降低，MDA的含量增加。表明，在低钾处理（0.5和0.1 mmol / L）下，实验中选择的洋地黄品种金春2号不能完全激活抗氧化酶的防御系统，及时清除活性氧，自我保护能力较弱。灾严重。
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